Дифференциальная диагностика пироплазм в мазке крови

1.1. Пироплазмидозы (бабезиоз, тейлериоз) — протозойные болезни животных, вызываемые возбудителями отряда Piroplasmida. Возбудители пироплазмидозов обладают видовой специфичностью.

Пироплазмидозы вызывают у лошадей — Рiroplasma сaballi (Bаbеsiа caballi), Nuttallia equi (В. equi): у крупного рогатого скота — Р. bigeminum (В. bigemina), Babesia bovis (Francaiella colchica), B. divergens; у овец и коз — P. ovis (В. motasi). B. ovis; у собак Р. canis (B. canis).

Тейлериоз вызывают у крупного рогатого скота — Theileria annulata и Th. sergenti; у овец и коз — Th. ovis.

Заболевания протекают остро, подостро, хронически и сопровождаются лихорадкой, анемией, желтушностью и кровоизлияниями на слизистых оболочках, гемоглобинурией (при пироплазмозе-бабезиозе), увеличением лимфатических узлов (при тейлериозе) и заканчиваются нередко гибелью животных.

1.2. Диагноз на пироплазмидозы ставят на основании эпизоотологических, клинических, патолого-анатомических данных и результатов лабораторных исследований (микроскопического, серологического).

1.3. Лабораторные исследования на пироплазмидозы включают:

микроскопию мазков из крови, внутренних органов, головного мозга, пунктатов лимфатических узлов;

морфологическую дифференциацию возбудителей;

постановку и учет реакции длительного связывания комплемента (РДСК) с нуталлийным антигеном для диагностики пироплазмидозов лошадей.

2.1. В лабораторию для исследования направляют от подозреваемых в заболевании или больных животных:

тонкие мазки крови из периферических сосудов уха, хвоста или венчика;

на тейлериоз дополнительно — мазки из пунктатов лимфатических узлов;

1 — 2 см 3 нативной сыворотки крови для серологического исследования на нутталлиоз, пироплазмоз лошадей;

от павших и убитых животных — часть печени, легких, селезенки, почки, сердца, головного мозга и лимфатические узлы.

2.2. Мазки крови берут в период развития симптомов болезни, при повышенной температуре, до применения специфического лечения.

2.3. Перед отбором материала у животного шерсть на месте взятия крови выстригают, кожу тщательно протирают вначале ватным тампоном, смоченным в растворе этилового спирта, а затем сухим. Стерильной иглой делают прокол вены ушной раковины или ножницами надрезают край верхушки уха или хвоста. К свободной выступившей капле крови легко прикасаются поверхностью сухого обезжиренного предметного стекла. Затем стекло быстро поворачивают вверх каплей и удерживают пальцами левой руки в горизонтальном положении. Шлифованным краем другого предметного стекла (или покровного) прикасаются к капле крови. Как только кровь равномерно распределится по ребру этого стекла, им быстро проводят по поверхности стекла справа налево под углом 45°. Ширина мазка должна быть уже предметного стекла. Для каждого нового мазка берут свежую каплю крови. От каждого животного готовят по 2 мазка.

При исследовании большого количества подозрительных в заболевании животных, размещенных в помещении при беспривязном содержании, можно брать кровь с соблюдением правил асептики из яремной вены (V. Jugularis) одновременно в 2 пробирки для приготовления мазков и получения сыворотки.

Для приготовления мазков кровь берут в пробирки, содержащие трилон Б* (из расчета 0,1 см 3 10 % раствора трилона Б на 1 см 3 ), в объеме 1,0 см 3 , в другие пробирки — для получения сыворотки. Пробирки закрывают резиновыми пробками.

Мазки крови готовят из трилоновой крови в лабораторных условиях в день ее взятия. Готовые мазки крови высушивают на воздухе; подсушивать их над пламенем или на солнце нельзя. В холодное время года мазки делают в теплом помещении или на стеклах, подогретых на крышке стерилизатора. Правильно приготовленные мазки должны быть тонкими, равномерными, достаточной длины и заканчиваться на 0,5 — 1,0 см от края стекла.

Кровь для получения сыворотки ставят в термостат (+37 °С) или другое теплое место; после полной ретракции сгустка, его отделяют от стенок пробирки, обводя вокруг тонкой стерильной металлической спицей, и ставят в темное (прохладное) место для отстаивания сыворотки. Используют для исследования в РДСК сыворотку без следов гемолиза эритроцитов.

* Трилон Б — динатриевая соль этилендиаминтетроуксусная кислота.

2.4. При взятии пунктата из лимфатических узлов животное надежно фиксируют, на месте пункции выстригают шерсть, кожу протирают ватным тампоном, смоченным в растворе спирта или настойки йода. Левой рукой оттягивают лимфатический узел и удерживают большим и указательным пальцами левой руки. Затем вглубь узла вводят стерильную иглу надевают на нее шприц и поршнем отсасывают лимфу. После шприц отсоединяют, иглу извлекают, а содержимое шприца выдавливают поршнем на предметное стекло, делают тонкие мазки и высушивают на воздухе.

2.5. На высушенных мазках из крови и пунктата острым предметом или простым карандашом пишут номер, вид животного и дату их приготовления.

2.6. Материал от павших или убитых животных отбирают до наступления трупного окоченения.

2.7. Мазки упаковывают в чистую непористую бумагу, складывая их попарно так, чтобы мазки располагались на противоположных (наружных) сторонах предметных стекол, патологический материал помещают во влагонепроницаемую тару; сыворотки крови сливают после полного отстоя в другие пробирки и плотно закрывают резиновыми пробками.

Упакованные материалы — мазки из крови и пунктатов или трилоновую кровь и сыворотки крови в пробирках, части органов доставляют в лабораторию в день отбора.

3.1. Из доставленного для исследования патологического материала делают по 2 мазка из каждого объекта.

3.1.1. Мазки из головного мозга готовят путем заключения мелких кусочков между предметными стеклами. После растирания помещенного между ними материала стекла разъединяют в противоположные стороны в горизонтальном направлении, в результате чего получается два тонких мазка. Мазки высушивают на воздухе.

3.1.2. Из паренхиматозных органов готовят мазки-отпечатки. Для этого вырезанный острым скальпелем кусочек органа захватывают пинцетом и свободной поверхностью кусочка делают на стекле несколько тонких отпечатков. Мазки-отпечатки высушивают на воздухе.

3.2. Мазки фиксируют этиловым ректифицированным 95 %-ным спиртом 20 — 25 мин или смесью этилового спирта и серного эфира в равных количествах — 15 — 20 минут. После высушивания мазки окрашивают азур-эозином по Романовскому-Гимзе (краску разводят дистиллированной водой рН 7,0 — 7,2 в соотношении 1:10) — 30 — 45 минут (в зависимости от качества краски и температуры помещения), промывают дистиллированной водой рН 7,0 — 7,2 до исчезновения следов краски на фильтровальной бумаге, высушивают и исследуют под иммерсионной системой микроскопа (×90). Качество окрашивания мазка определяют под микроскопом по окрашиванию лейкоцитов. Если лейкоциты бледно окрасились или не окрасились — исследовать препарат бесполезно, необходимо применить другую серию краски.

3.3. При микроскопии обнаруживают пироплазмы (бабезии) в эритроцитах, тейлерии и нутталлии (бабезии) экви — в эритроцитах и в клетках лимфоидной ткани в виде различной формы шизонтов. Цитоплазма пироплазмид окрашивается в голубовато-синеватый цвет, глыбки хроматина — в красно-фиолетовый или красный.

Рекомендуем прочесть:  Кошку Рвет При Запахе Едыидет Слюна

4.1. Пироплазмид дифференцируют между собой по их форме, углу соединения парных грушевидных форм, соотношению их размера к радиусу эритроцита, локализации в эритроците, а также от анаплазм и эперитрозоон. При определении пользуются следующей таблицей:

Размер парных грушевидных форм по отношению к радиусу эритроцита

3.2. Мазки фиксируют этиловым ректифицированным 95 %-ным спиртом 20 — 25 мин или смесью этилового спирта и серного эфира в равных количествах — 15 — 20 минут. После высушивания мазки окрашивают азур-эозином по Романовскому-Гимзе (краску разводят дистиллированной водой рН 7,0 — 7,2 в соотношении 1:10) — 30 — 45 минут (в зависимости от качества краски и температуры помещения), промывают дистиллированной водой рН 7,0 — 7,2 до исчезновения следов краски на фильтровальной бумаге, высушивают и исследуют под иммерсионной системой микроскопа (×90). Качество окрашивания мазка определяют под микроскопом по окрашиванию лейкоцитов. Если лейкоциты бледно окрасились или не окрасились — исследовать препарат бесполезно, необходимо применить другую серию краски.

ДИАГНОСТИКА ПИРОПЛАЗМИДОЗОВ

Правильный и своевременно поставленный диагноз на то или другое пироплазмпдозное заболевание является обязательным условием проведения эффективных лечебных и профилактических мероприятий в хозяйстве. Диагноз моя;ет быть успешно поставлен только тогда, когда ветеринарный фельдшер проводит целый комплекс исследований: внимательно изучает эпизоотологию заболевания, клинические признаки больного, учитывает патологоанатомические изменения в различных органах и тканях павших животных, анализирует результаты микроскопического исследования окрашенных мазков крови от больных и мазков, взятых из паренхиматозных органов павших животных.

Окончательный диагноз на пироплазмидозы ставят микроскопически. Для этого берут мазки крови от больных из кончика уха. Место взятия крови выстригают, тщательно протирают спиртом или эфиром. Прокол иглой делают в области поверхностных вен, берут первую каплю крови, шлифованным стеклом делают мазок на обезжиренном предметном стекле. Мазок должен быть тонкий и ровный, с обрывистыми концами во второй трети стекла. Мазок высушивают на воздухе, фиксируют метиловым спиртом 5 мин и окрашивают по Романовскому — Гимза. Концентрированный раствор краски разводят дистиллированной водой (2-3 капли краски-на 1 мл воды). Готовый раствор подливают под мазок и держат его под краской в теплое время 30-40 мин, а при более прохладной погоде 60 мин. Окрашенный мазок промывают водопроводной водой, высушивают и исследуют под иммерсионной системой микроскопа.

Пироплазмиды хорошо видны в эритроцитах в виде овальных, кольцевидных и грушевидных форм. Цитоплазма паразитов окрашивается в голубой, а ядро в темно-красный или рубиновый цвет. При тщательном изучении морфологии возбудителя под микроскопом определяют, к какому роду и виду он относится, и таким образом ставят диагноз.

При пироплазмидозах можно применять и химиотерапевтический метод диагностики. Его используют для дифференциации сходных заболеваний. Например, при пироплазмозе лошадей весьма эффективен трипансинь (трипанблау).

При введении его больным через 24-48 ч снижается температура и исчезает Паразитемия в крови, тогда как при нутталлиозе он не оказывает никакого действия на больное животное и на возбудителя.

В местах распространения франсаиеллеза заболевание нередко протекает таким образом, что у больного животного в первые 2-3 дня болезни наблюдается высокая температура тела, а паразитов в крови не обнаруживают. В этих случаях прибегают к химиогерапевтическому методу диагностики.

Больному вводят беренил (или азидин). При этом черег сутки температура тела снижается до нормы.

ДИАГНОСТИКА ПИРОПЛАЗМИДОЗОВ

Методические указания

по лабораторным исследованиям на

пироплазмидозы животных

1.1. 1.1. Пироплазмидозы (бабезиоз, тейлериоз) — протозойные болезни животных, вызываемые возбудителями отряда piroplasmida. Возбудители пироплазмидозов обладают видовой специфичностью.

Бабебиоз вызывают: у лошадей babesia caballi (piroplasma caballi), b. equi (nuttallia equi); у крупного рогатого скота — В.bovis (fransaiella colchica), b.bigemina (p.bigeminum), b.divergens (b. bovis); у овец и коз — b.ovis, b.motasi (p.ovis); у собак — b.canis (p.canis).

Тейлериоз вызывают: у крупного рогатого скота -theilezia annulata и th.sergenti; у овец и коз — th. ovis.

Заболевания протекают остро, подостро, хронически и сопровождаются лихорадкой, анемией, желтушностыо и кровоизлиянием на слизистых оболочках, гемоглобинурией (при бабезиозе), увеличением лимфатических узлов (при тейлериозе) и заканчиваются нередко гибелью.

1.2.Диагноз на пироплазмидозы ставят на основании эпизоотологических, клинических, патологоанатомических данных и результатов микроскопического исследования.

1.3. Лабораторные исследования на пироплазмидоаы включают: микроскопию мазков крови, внутренних органов, головного мозга, пунктатов лимфатических узлов; дифференциацию возбудителей.

2. Отбор и пересылка материала для исследования.

2.1. В лабораторию для исследования направляют: от подозреваемых в заболевании или больных животных — тонкие мазки крови из периферических сосудов уха, хвоста или венчика, на тейлериоз дополнительно — мазки из пунктатов лимфатических узлов; от павших или убитых — часть печени, легких, селезенки, почки, гепатита головного мозга и лимфатические узлы.

2.2. Мазки крови берут в период развития симптомов болезни, при повышенной температуре, до применения специфического лечения.

2.2. Перед отбором материала у животного шерсть на месте взятия крови выстригают, кожу тщательно протирают в начале ватным тампоном, смоченным в растворе спирта, а затем сухим. Стерильной иглой делают прокол вены ушной раковины или ножницами надрезают край верхушки уха или хвоста. К свободно выступившей капле крови легко прикасаются поверхностью сухого обезжиренного предметного стекла. Затем стекло быстро поворачивают вверх каплей и удерживают пальцами, левой руки в горизонтальном положении. Шлифованным краем другого предметного или покровного стекла прикасаются к капле крови. Как только кровь равномерно распределится по ребру этого стекла, его быстро проводят по поверхности стекла справа налево под углом 45°. Ширина мазка должна быть уже предметного стекла. Для каждого НОВОГО мазка берут свежую каплю крови. От каждого животного готовят по 2 мазка.

Готовые мазки крови высушивают на воздухе; подсушивать их над пламенем или на солнце нельзя. В холодное время года мазки делают в теплом помещении или на стеклах, подогретых на крышке стерилизатора.

Правильно приготовленные мазки крови должны быть тонкие, равномерные, достаточной длины и заканчиваться за 0,5-1,0 см от края стекла.

2.4.При взятии пунктата из лимфатического узла животное хорошо фиксируют, на месте пункции выстригают шерсть, кожу протирают ватным тампоном, смоченным в растворе спирта или настойке йода. Левой рукой оттягивают лимфатический узел и удерживают большим и указательным пальцами левой руки. Затем вглубь узла вводят стерильную иглу, надевают на нее шприц и поршнем отсасывают лимфу. После шприц отсоединяют, иглу извлекают, а содержимое шприца выдавливают поршнем на

предметное стекло, делая тонкие мазки, которые высушивают на воздухе.

2.5. На высушенных мазках крови и пунктата острым предметом или простым карандашом пишут номер, вид животного и дату приготовления мазка.

Рекомендуем прочесть:  Нужно ли колоть физраствор коту если вылечить нельзя

2.6. Материал от павших или убитых животных отбирают до наступления трупного окоченения.

2.7. Мазки упаковывают в чистую бумагу, патологический материал — во влагонепроницаемую тару и доставляют в лабораторию в день отбора.

3. Микроскопическое исследование

3.1. Из доставленного для исследования патологического материала делают по 2 мазка из каждого объекта.

3.1.1. Мазки из головного мозга готовят путем заключения мелких кусочков между предметными стеклами. После растирания помещенного между ними материала стекла разъединяют в противоположные стороны в горизонтальном направлении, в результате чего получаются два довольно тонких мазка. Мазки высушивают на воздухе.

3.1.2. Из паренхиматозных органов готовят мазки-отпечатки. Для этого вырезанный острым скальпелем кусочек органа захватывают пинцетом и свободной поверхностью кусочка делают на стекле несколько тонких отпечатков, мазки-отпечатки высушивают на воздухе.

3.2. Мазки фиксируют этиловым ректификованным спиртом 96°- ным в течение 20 -25 мин. или смесью этилового спирта и серного эфира в равных количествах — 10-15 мин.

После высушивания мазки окрашивают азур — эозином по Романовскому-Гимзе (краску разводят дистиллированной водой рН 7,0-7,2 — в соотношении 1:10) — 30-45 мин. (в зависимости от качества краски и температуры помещения), промывают дистиллированной водой рН 7,0-7,2 до исчезновения следов краски на фильтровальной бумаге, высушивают и исследуют под иммерсионной системой микроскопа (х90). Качество окраски мазка определяют под микроскопом по окраске лейкоцитов. Если лейкоциты бледно окрасились или не окрасились, исследовать препарат бесполезно, необходимо применить другую серию краски.

3.3. При микроскопии обнаруживают бабезии в эритроцитах, теилерии и Б.екви — еще в клетках лимфоидной ткани в виде различной формы шизонтов. Цитоплазма пироплазмид окрашивается в голубовато-синеватый цвет, глыбки хроматина — в красно-фиолетовый или красный.

4. Дифференциальная диагностика возбудителей и оценка результатов.

4.1. Пироплазмид дифференцируют между собой (по форме, углу соединения парных форм, соотношение их размера и радиуса эритроцита, локализации в эритроците), а также от

анаплазм и эперитрозоон. При определении пользуются следующей таблицей:

тромбоцитов, в плазме крови

4.2. Результат исследования считают положительным при обнаружении в препарате из исходного материале возбудителей пироплазмидозов.

5. Срок микроскопического исследования до 2 дн.

Методические указания по лабораторным исследованиям на пироплазмидозы животных разработаны сотрудниками Всероссийского института экспериментальной ветеринарии и Центральной научно-производственной ветеринарной лаборатории.

к «Методическим указаниям по лабораторным исследованиям на пироплазмидозы животных»

Пироплазмидозы животных

Пироплазмидозы — протозойные болезни животных, вызываемые возбудителями отряда piroplasmida. Пироплазмиды — одноклеточные простейшие организмы со сложной структурой и жизненным циклом. Возбудители паразитируют у позвоночных и клещей; у первых пироплазмиды размножаются в эритроцитах и клетках лимфатической системы (тейлерии, бабезия екви), цикл развития возбудителей в организме клещей-переносчиков полностью не расшифрован.

Характерной особенностью возбудителей пироплазмидозов является их специфичность к определенным вилам хозяев.

Болезнь проявляется там, где имеются зараженные соответствующим видом возбудителя клещи -переносчики, паравитоносители и восприимчивые животные. Сезон заболевания животных совпадает с периодом активной фазы клещей-переносчиков, являющихся одним из главных звеньев в эпизоотической цепи. В естественных условиях пироплазмидозы возникают только в результате паразитирования зараженного соответствующим видом клеща-переносчика. Следовательно взаимный обмен возбудителями между теплокровным хозяином и клещом-переносчиком обусловливает сохранение возбудителей в пироплазмидозных очагах. На территории страны встречаются 6 родов

клещей, которые обитают в определенных микроклиматических условиях.

Возбудитель болезни попадает в организм восприимчивого животного со слюной клеща-переносчика во время питания на животном.

Размножение возбудителей бабезиоза в организме восприимчивого животного происходит в эритроцитах капилляров внутренних органов, затем в эритроцитах кровяного русла. Паразиты питаются за счет эритроцитов путем осмоса. Выделяемые паразитами продукты межуточного обмена вызывают нарушение функции органов кроветворения, нарушается кровообращение, возникает застой в малом кругу кровообращения, появляется одышка, на почве застойных явлений происходит расстройство деятельности внутренних органов, нарушается обмен веществ, возникает порозность стенок сосудов и появляются кровоизлияния на слизистых, серозных оболочках, во внутренних органах; расстройство работы сердца и других органов часто приводит к отеку легких, затем и к гибели животного. При тейлериозе возбудитель, попавший в организм животного размножается вначале в лимфатических узлах, затем в паренхиматозных органах и внедряется в эритроциты.

Первые признаки болезни проявляются через 8-12 дней после нападения зараженных клещей. У животных отмечают высокую температуру, угнетение, потерю аппетита, анемию, нередко желтушность; при бабезиозе — гемоглобинурию, нарушение функции сердца, желудочно-кишечного тракта и других органов вменяется морфологический состав крови. Продолжительность болезни 1-3 недели. Если животные пали, то выздоравливанне проходит медленно. Смертность племенного и привозного

крупного рогатого скота при тейлериозе выше, чем при бабезиозе. Переболевшие животные годами остаются носителями возбудителей и в течение всего этого периода они невосприимчивы к повторному заражению одноименным возбудителем при ежегодном с ним контактировании.

При вскрытия часто обнаруживают желтушность тканей, кровоизлияния на серозных и слизистых оболочках и в мышце сердца. Лимфатические узлы, селезенка увеличены, с кровоизлияниями, печень увеличена, желчный пузырь растянут, мочевой пузырь наполнен мочой красноватого цвета (при бабезиозе), в слизистых оболочках сычуга, иногда кишечника, имеются язвы (при тейлериозе).

3.1.1. Мазки из головного мозга готовят путем заключения мелких кусочков между предметными стеклами. После растирания помещенного между ними материала стекла разъединяют в противоположные стороны в горизонтальном направлении, в результате чего получаются два довольно тонких мазка. Мазки высушивают на воздухе.

Бабезиоз собак — это протозойное заболевание, возбудитель которого передается при укусе собак клещами.
Данный возбудитель вызывает бабезиоз собак, который также называют пироплазмозом.

Окончательный диагноз основан на обнаружении паразитов в мазках крови. Для мерозоитов наиболее характерно парное присутствие внутри эритроцитов, они имеют форму груши и их размер достигает 4 — 5 мкм (фото 1). В данной статье мы будем говорить только о Babesia canis, которые встречаются в Европе (а также и у нас), и о Babesia gibsoni (они более мелкие и имеют круглую или овальную форму). Все способы обычной окраски позволяют визуализировать паразитов, но наиболее быстрые из них (например, Diff-Quick или RAL) намного лучше адаптированы для постановки диагноза в условиях клиники во время проведения консультации.

Отмечено, что Babesia canis можно обнаружить в неокрашенных мазках крови, но, несмотря на это, наиболее достоверным и информативным является способ быстрой окраски. В основном мерозоиты в достаточно больших количествах находятся по краям мазка и в его косичках (самой тонкой части мазка, образующейся в форме косичек при нанесении его на предметное стекло), что позволяет провести анализ в течение нескольких минут. Взятие крови из капилляров осуществляют путём надреза в области ушной раковины, так как периферическая венозная кровь в большей степени, чем центральная поражена паразитами.

Рекомендуем прочесть:  У собаки дергаются мышцы на груди

Помимо обнаружения наиболее типичных грушевидных форм паразитов, представленных парами, встречаются и другие варианты Babesia canis: в фазе деления; в виде нескольких пар (по 4 и 8 мерозоитов в одном эритроците), которые обнаруживают обычно при остром течении заболевания (фото 1 и 2); в форме амёбы или аннулярные (фото 3), выявляемые, в основном, в случаях хронического течения заболевания.

Значительно реже мерозоиты обнаруживают в свободном состоянии вне эритроцитов: в данном случае они часто имеют форму кораблика, иногда кольца (фото 4). Все варьирующиеся формы паразита позволяют поставить окончательный диагноз. Несмотря на это, всегда следует быть очень осторожным, если удалось обнаружить только один мерозоит в мазке, и он не имеет соответствующей формы и/или типичной локализации. Некоторые артефакты могут привести к ошибке при постановке диагноза на бабезиоз (например: наслоение тромбоцита на эритроцит, плохая фиксация или наличие «пузырьков» внутри эритроцитов после окраски мазка, попадание на поверхность эритроцитов и предметное стекло мелких кусочков краски).

Если исследование мазка крови не позволяет быстро выявить паразитов, то следует искать косвенные признаки, указывающие на их персистенцию в крови. Косвенные признаки проявляются в отношении эритроцитов (полихроматофилияанизоцитоз), лейкоцитов (лейкопения, мононуклеоз) и тромбоцитов (тромбоцитопения).

Несмотря на то, что картина данного заболевания характеризуется такими классическими признаками, как гипертермия, гемолиз с элементами гемоглобинурии и регенеративная анемия (полихроматофильный анизоцитоз эритроцитов, присутствие эритробластов), она не всегда имеет четкое проявление во время первого исследования (из семи иллюстраций наиболее характерная картина представлена на фото 5).

Следовательно, отсутствие признаков регенерации в мазках крови не дает повода для прекращения поиска бабезий (пироплазм). Форма заболевания с выраженным гипергемолизом встречается приблизительно в пятнадцати процентах случаев у больных собак: в мазках крови обнаруживают признаки ярко выраженной регенерации (иногда сопровождающейся сильным лейкоцитозом), в основном свидетельствующей о гемолитической анемии, возникшей вследствие иммунной реакции. Проведение лабораторного исследования на бабезиоз осуществляют после постановки предварительного диагноза. Бывает, что после длительных поисков возбудителя в мазках крови и костном мозге удается обнаружить только одну типичную двойную форму B.canis в мазках, полученных из костного мозга собак с характерной клинической картиной заболевания.

Количество лейкоцитов в зависимости от заболевания существенно варьируется (у собак с повышенной температурой слабо выраженная взаимосвязь между лейкопенией и мононуклеозом требует обязательного ведения поиска на бабезиоз или эрлихиоз). Макрофаги являются очень характерным признаком (фото 7), если речь идет о эритрофагоцитозе (фото 5 и 6). Дифференциальный диагноз проводят между эритрофагоцитозом и морулой Ehrlichia canis. В последнем случае картина напоминает ежевику, окраска в основном базофильная и гомогенная с элементами эритрофагоцитоза (фото 6).

Мононуклеоз часто присутствует при бабезиозе, и его следует отличать от лейкемии или лейкемоидной реакции, которая может сопровождаться развитием бактериальной инфекции (фото 7). В повседневной практике, если не удается выделить возбудителя, но наблюдают развитие клинических признаков заболевания, осуществляют повторное исследование мазков крови, что позволяет через несколько дней поставить окончательный диагноз. При заболевании бабезиозом можно обнаружить и выраженную нейтрофилию.

При бабезиозе также выражена и стабильно проявляется тромбоцитопения у 81% заболевших собак, имеющих менее 50х109 тромбоцитов/л, что соответствует как минимум трем тромбоцитам в поле зрения при исследовании мазков крови под иммерсией (х1000). На семи представленных иллюстрациях виден только один тромбоцит. По данным собственных исследований, если общий количественный показатель тромбоцитов достигает уровня менее 30х109/л, то в мазке можно видеть только один из них. Такие результаты исследований и наличие тромбоцитарного анизоцитоза свидетельствуют о бабезиозе, протекающем без проявления патогномоничных признаков, а также о многих других нарушениях, способных спровоцировать возникновение тромбоцитопении.

Бабезиоз собак — это протозойное заболевание, возбудитель которого передается при укусе собак клещами.
Данный возбудитель вызывает бабезиоз собак, который также называют пироплазмозом.

Анализ мочи для обнаружения гемоглобина — косвенный метод.

Мазок крови для обнаружения пироплазм в эритроцитах — прямой метод.

Общий клинический анализ крови для оценки количества тромбоцитов — косвенный метод.

ПЦР анализ крови на пироплазмоз (полимеразная цепная реакция на обнаружение антигена пироплазм) — прямой метод.

Надо учитывать, что отрицательные анализы не гарантируют отсутствие болезни. Но и положительные анализы не означают, что у собаки разовьется пироплазмоз. При диагностике следует проводить комплексную оценку анализов и клинического состояния собаки.

Анализ мочи для обнаружения гемоглобина

Моча может быть внешне от немного более концентрированной, до бурого или даже черного цвета. При анализе обнаруживается гемоглобин, может быть билирубин. В самом начале пироплазмоза моча может быть нормального цвета и не содержит гемоглобина — как правило, повторный анализ через 12-24 часа уже показывает появление гемоглобина, а цвет при своевременном лечении пироплазмоза может не изменится.

Мазок крови для обнаружения пироплазм в эритроцитах

Исследование мазков крови под микроскопом и обнаружение бабезий в эритроцитах. Это наиболее часто используемое исследование для подтверждения пироплазмоза собак. К сожалению не всегда наличие паразитов доказывает развитие пироплазмоза, (это может быть хроническая форма болезни или носительство после предыдущего заболевания пироплазмозом или у природно устойчивых животных) и наоборот даже при яркой форме болезни не во всех мазках крови обнаруживаются пироплазмы. Причем капиллярная или венозная используется кровь не очень важно, важнее в этой ситуации сделать несколько мазков из вены и из уха (или когтя).

Общий клинический анализ крови для оценки количества тромбоцитов

Бабезиоз (пироплазмоз), вызванный Babesia gibsoni, является трансмиссивным (переносится клещами) протозойным заболеванием, которое характеризуется гемолитической анемией, тромбоцитопенией (снижением количества тромбоцитов в крови), вялостью и спленомегалией (увеличением селезенки).

ПЦР анализ крови на пироплазмоз (полимеразная цепная реакция на обнаружение антигена пироплазм)

В проведенных учеными исследованиях диагноз на бабезиоз ставился в основном методом полимеразно-цепной реакции (ПЦР), гораздо реже методом прямой микроскопии мазков крови окрашенных по Гимзе. Как утверждают авторы, серологические тесты менее чувствительны и уступают в специфичности, поэтому не подходят для видовой диагностики возбудителей бабезиоза (пироплазмоза).

Ветпомощь 24 часа все районы Москвы +7 (495) 972-10-01

Ветпомощь 24 часа все районы Москвы +7 (495) 972-10-01

Бабезиоз (пироплазмоз), вызванный Babesia gibsoni, является трансмиссивным (переносится клещами) протозойным заболеванием, которое характеризуется гемолитической анемией, тромбоцитопенией (снижением количества тромбоцитов в крови), вялостью и спленомегалией (увеличением селезенки).

Давайте будем совместно делать уникальный материал еще лучше, и после его прочтения, просим Вас сделать репост в удобную для Вас соц. сеть.

Оцените статью
( Пока оценок нет )